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油紅O屬于偶氮染料，是很強的脂溶劑和染脂劑，與甘油三酯結合呈小脂滴狀。脂溶性染料能溶于組織和細胞中的脂類，它在脂類中的溶解度比在溶劑中大。當組織切片置入染液時，染料則離開染液而溶于組織內的脂質(如脂滴)中，使組織內的脂滴呈橘紅色。
染色結果：細胞核被蘇木精染成鮮明的藍色，組織內脂滴被染成橘紅色。
1樣本保存
1.1取材及冷凍
切取組織時應使用鋒利的刀、剪，切取組織塊時，從刀的根部開始向后拉動切開組織。組織塊的厚度約為0.2~0.3cm，大小為1.5cm×1.5cm x 0.3cm為宜。將要切取的平面朝下放到塑料包埋盒底部，在液氮表面停留約30秒把組織凍硬，注意停留太久易使組織凍裂。立即把凍硬的組織塊裝入自封袋中保存于-80℃低溫冰箱。
1.2切片
切片前將組織樣本置于-20℃冰箱內復溫30 min，切片厚度在5～7 μm，太厚貼片不牢固，更不利于鏡下觀察。包埋可用OCT,也可用膠水代替。用高粘度膠水在支撐架上滴加形成一個小臺，將組織放上，在組織周圍用膠水包埋一下放在冷臺上冷凍。包埋使組織上、下方有一定的邊，有利于連續切片，而且展片時可以避免組織皺縮。待組織達適當硬度即可切片，切片時組織的冷凍程度是切片的關鍵環節，凍得過硬，切片呈碎屑狀；凍得不夠，切片呈粥糜狀或切不成片。
1.3貼片和固定
載玻片必須預先處理，常用多聚賴氨酸包被。需要注意多聚賴氨酸不可反復使用，且不能用玻璃容器存放。將切片小心貼附于載玻片上，貼片時手要穩，并且手要有一個向下伸展的動作，立即將切片放入固定液中。以往的經驗用吹風機吹干再固定，但*干后的組織容易在沖洗時脫片，并且組織細胞發生退行性變；另外，可溶性抗原不能晾干，應立即固定。固定液的選擇因抗原而異，但一般抗原可用4℃預冷的丙酮固定15 min，此固定劑比較溫和，對抗原保存較好。
2 油紅O染色步驟
1.1．切片用4%甲醛固定10分鐘；
2.2．蒸餾水洗；
2.3．60％異丙醇浸洗；
2.4．油紅O染液10分鐘(染液可回收再利用)；
2.5．60％異丙醇分色至背景無色；
2.6．蒸餾水洗；
2.7．Mayer蘇木精復染；
2.8. 自來水洗(藍化)1～3分鐘；
2.9．蒸餾水洗；
2.10．甘油明膠封片。
3 圖像采集
通過顯微鏡拍照，采集分析樣本相關部位。
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